以质粒或噬菌体作载体进行DNA克隆，在理论上是很简捷的，即用一种限制酶切割质粒DNA，然后在体外与外源，DNA(如干扰素基因，生长激素基因)相连接，再用所得到的重组质粒转化细菌如大肠杆菌，以鉴定重组DNA。

　　通常所用的质粒载体有pBR322、pUC18、pUC19等，噬菌载体有M13噬菌体载体等。

　　一、质粒或噬菌体载体与外源DNA的连接反应

　　外源DNA片段末端的性质，以及质粒载体和外源DNA上限制酶切位点的性质决定了质粒或噬菌体与外源DNA连接反应的不同策略。

　　(一)外源DNA带有非互补突出端的片段

　　用两种不同的限制酶分别消化质粒等载体和外源DNA，可以产生带非互补突出端的片段，这是最容易连接的片段，如图24-1所示。

　　将已经连接外源DNA的细菌质粒载体转化感受态的大肠杆菌，然后在含有AP等抗生素的平板上鉴定阳性重组体菌落，具体方法有：①检查α互补能力的丧失情况;②对小量制备的质粒DNA进行限制酶切的分析;③核酸杂交。

　　(二)外源DNA带有相同末端(平端或粘端)的片段

　　带有相同末端(平端或粘端)的外源DNA片段必须克隆到具有匹配末端的线状质粒或噬菌体载体中，在连接反应中，质粒或噬菌体载体可能发生自身环化，也可能形成串联寡聚物。因而，常常使用碱性磷酸酶去除5’磷酸基团以抑制质粒DNA的自身连接和环化。用细菌碱性磷酸酶(BAP)或牛小肠碱性磷酸酶(CIP)去除线状DNA两端的5’磷酸可以最大限度地减少质粒DNA的自身环化。而具有5’末端磷酸的外源DNA片段可有效地与去磷酸化质粒DNA相连接，产生一个含有两个切口的开环分子。因为环化DNA(即使只带切口的环状DNA)的转化效率比线状DNA高得多，所以大多数转化体都含有重组质粒，如图24-2所示。

　　图24-2 利用磷酸酶防止载体DNA的重新环化

　　(三)外源DNA带有平端的片段

　　外源DNA片段带有平端的片段，平端的连接效率比带有互补末端的DNA要低得多。因此，涉及平端分子的连接反应所要求的T4噬菌体DNA连接酶的浓度和外源及质粒DNA或噬菌体DNA的浓度都要高得多。

　　(四)连接反应的体系

　　10×连接缓冲液1μl

　　10mMATp 1μl

　　质粒或噬菌体DNa200ng～1μg

　　外源DNa 200ng～1μg

　　T4噬菌DNA连接酶0.5～2nuits

　　4-6℃温育8～24h

　　连接反应结束时，取1～5μl上述反应混合物转化200μl的大肠杆菌感受态细胞，即可将外源DNA与载体接连起来。

　　二、大肠杆菌感受态细胞的制备和转化

　　细菌转化的方法多以Mendel和Higa(1970)的发现为基础，其基本方法是用冰预冷的CaCl2或多种2价阳离子等处理细菌，使之进入感受态得以转化。

　　用CaCl2制备新鲜或冷冻的大肠杆菌感受态细胞，常用于成批制备感受态细菌。本法适用于大多数大肠杆菌菌株，且迅速、重复性好。操作过程简述如下。

　　1.从37℃培养16～20h的新鲜平板中挑取一个单菌落(如大肠杆菌DH52)，或1ml新鲜的16～20h过夜培养物，转到一个含有100mlLB培养基的1L或500ml烧瓶中。于37℃剧烈振摇培养约2～3h(旋转摇床200～300r/min)，每隔20～30min测量OD600值≈0.4。

　　2.在无菌条件下将细菌转移到一个，用冰预冷的50ml聚丙烯离心管中，在冰上放置10～20min。

　　3.于4℃用SorvallGS2转头(或与其离心管相配的转头)以4000r/min离心10min，以回收细胞。

　　4.倒数培养液，将管倒置1min以使最后残留的痕量培养液流尽。

　　5.以10ml用冰预冷的0.1mMCaCl2重悬每份沉淀，放于冰上。

　　6.于4℃用SorvallGS3转头(或与其相应的转头)以4000r/min离心10min，以回收细胞。

　　7.倒出培养液，将管倒置1min以使最后残留的痕量培养液流尽。

　　8.每50ml初始培养物用2ml冰预冷的0.1M CaCl2重悬每份沉定，此时，可以迅速将细胞分装成小份，液氮中冰冻，-70℃贮存备用。

　　9.用冷却的无菌吸头从每种感受态细胞悬液中各取200μl转移到无菌的微量离心管中，每管加DNA或连接反应混合物(体积≤10μl，DNA≤50ng)，轻轻旋转以混匀内容物，在冰中放置30min。

　　10.将离心管放到预加温到40℃的循环水浴中的试管架上，放置90s～2min，不要摇动试管。

　　11.快速将管转移到冰浴中，使细胞冷却1～2min。

　　12.每离心管加800μlSOC培养基，用水浴将培养基加温到37℃，然后将管转移到37℃摇床上，温育45min使细菌复苏，并且表达质粒编码的抗生素抗性标记基因。

　　13.将适当体积(每个90mm平板可达200μl)已转化的感受态细胞转移到含200mmol/l MgSO4和相应抗生素的SOB培养基上。

　　14.将平板置于室温至液体被吸收。

　　15.倒置平皿，于37℃培养，12～16h后可出现菌落。

　　三、用M13噬菌体转染感受态细胞

　　1.感受态细胞的制备

　　(1)用JM101或TG1等菌的培养菌液在M9基本培养基平板上的划线培养，于37℃温育24～36h。

　　(2)批量制备冻存的感受态细胞的方法，同大肠杆菌感受态细胞的制备。

　　2.用M13噬菌体转染感受态细胞

　　(1)用2×YT或SOB培养液于37℃持续地振摇，将用于铺平板的细胞(JM101或TG1等)培养过夜。

　　(2)从-70℃以下冰箱中取出一份冻存的JM101或TGI感受态细菌，于室温慢慢融化，立即放在冰上10min。

　　(3)于各感受态细胞管中，加入连接反应液，应同时做两个对照，一个加5pgM13噬菌体双链环状DNA，另一个则完全没有DNA。轻弹管外壁使其混匀，冰浴30min。

　　(4)取数支无菌培养管，分别加入3ml熔化的2×YT或SOB顶层琼脂，置47℃以备步骤6使用。

　　(5)将装有感受态细胞和DNA的培养管放入42℃水浴，温育整整90s，立即将管放回冰浴之中，2min后各管加入1ml过夜培养的JM101或TG1等菌液，混匀。

　　(6)在步骤(4)准备的装有溶化的2×YT或SOB顶层琼脂的管内各加入40μlX-gal溶液(20mg/ml，溶于二甲基甲酰胺)和4μlIPTG溶液(200mg/ml)振荡混匀，分别取(5)中混合物各300μl加入各管，振荡混匀，立即将管内混合物倾入标记好的LB琼脂平板上，轻轻旋动平皿，以使细菌与顶层琼脂分布均匀。

　　(7)盖好平皿，于室温放置5min，使顶层琼脂凝固，将平板倒置于37℃培养。4个h后噬斑开始出现，8～12h后菌斑不再变化。野生型M13噬菌体形成的噬斑为深蓝色，重组噬菌体则可形成无色噬斑。

　　四、含重组质粒的细胞菌落的鉴定

　　含重组质粒的细胞菌落常用的鉴定方法有：①小规模制备质粒DNA进行限制酶切分析;②α互补;③插入失活;④杂交筛选。下面简要介绍小规模制备质粒DNA进行限制性酶切分析。小规模制备质粒DNA可用天美等公司的Wizard Minipreps DNA试剂盒或采用下述方法：

　　1.挑取一些独立的转化菌落进行小规模培养，用无菌牙签或挑种环挑取单菌落于2ml含有相应抗生素的LB液体培养基中，于37℃剧烈振摇下培养过夜。

　　2.将1.5ml培养物倒入微量离心管中，用微量离心机于4℃以12000g离心30s，将剩余的培养物贮存于4℃。

　　3.吸取培养液，使细菌沉淀尽可能干燥。

　　4.将细菌沉淀重悬于200μl溶液Ⅰ中，剧烈振荡。

　　溶液Ⅰ 25mmol/L Tris·HCl(pH8.0)

　　10mmol/LEDTA(pH8.0)

　　溶液Ⅰ可成批配制，每瓶约100ml，高压下101bf/m2(6.895×104pa)蒸气灭菌15min，贮存于4℃。

　　5.加200μl新配制的溶液Ⅱ。

　　溶液Ⅱ 0.2mol/L NaOH

　　1% SDS

　　盖紧管口，快速颠倒离心管5次，以混合内容物。应确保离心管的整个表面均与溶液Ⅱ接触。不要振荡，将离心管放置于冰上。

　　6.加200μl溶液Ⅲ

　　溶液Ⅲ 5mol/l 乙酸甲 60ml

　　冰乙酸11.5ml

　　水28.5ml

　　盖紧管口，将管倒置，温和振荡10min，使溶液Ⅲ在粘稠的细菌裂解物中分散均匀，之后将管置于冰上3～5min。

　　7.用微量离心管于4℃以12000g离心5min，将上清转移另一离心管中。

　　8.加等量酚和氯仿，振荡混匀，用微量离心机于4℃以12000g离心2min，将上清转移到另一离心管中。

　　9.用2倍体积的乙醇于室温沉淀双链DNA，振荡混合，于室温放置2min。

　　10.用微量离心机于4℃以12000g离心5min。

　　11.小心吸去上清液，将离管倒置于一张纸巾上，以使所有液体流出。再将附于管壁的液滴除尽。

　　12.用1ml70%乙醇于4℃洗涤双链DNA沉淀，按步骤1所述方法去掉上清，在空气中使核酸沉淀，干燥10min。

　　13.用50μl含无DNA酶的胰RNA酶(20μl/ml)的TE重新溶解核酸，振荡，贮存于-20℃。

　　14.用适当限制性内切酶分析所得DNA。

　　五、M13噬菌体重组DNA分子导入大肠杆菌

　　1.感受态细胞的制备

　　(1)将1ml过夜培养的细菌(如DH52、TG1、TM101)接种于100ml2×YT培养于500ml烧瓶。于37℃刷烈振荡，通常≥200rpm培养的细菌密度约OD550=0.2～0.5(5×107cells/ml),需2～4h。

　　(2)将培养物放于冰上致冷10min，于4℃离心细菌培养物，10000rpm离心10min。

　　(3)弃除上清，将细菌悬浮于原始培养体积的一半(约50ml)的50mMCaCl2和10mmTris·HCl(pH8.0)无菌冷冻液体中。

　　(4)将细菌悬浮放在冰上约5min，然后将悬浮物于4℃10000/rpm离心10min。

　　(5)弃上清，悬浮细菌于原始培养体积的1/15的50mMCaCl和10mMTris·HCl(pH8.0)无菌冷冻中。此时的细胞是感受态细胞，即可用于转化。200μl分装于无菌的1.5ml微量离心管中，贮存于-80℃冰箱中。

　　2.转化程序

　　(1)取出200μl感受态细胞慢慢使其溶化，并立即放于冰上，加入DNA或连接反应混合物，DNA量通常≤50mg。用手指弹打试管10次，使之混匀，然后放在冰上40～45min。

　　(2)将管放于42℃水浴中2min。

　　(3)然后每管直接加入1.0ml2×YT培养基，倒置混匀，并于37℃培养8～12h，干浴或水浴，不需振摇。此期间使细菌生长并开始表达抗菌素。

　　(4)每200μl转化混合物分别于6个2×YT琼脂培养板上补充相应抗生素，并含有X-gal(20mg/ml)、IPTG(200mg/ml)。

　　(5)铺板使细菌混合物干后，倒转平板放于30～37℃培养箱中18～22h。克隆在此期间应该出现，否则转化不成功。